Таблица 32.
Результаты действия 2% раствора дезинфектанта Virkon - S на яйца Ophidascaris papuanus.
Экспозиция, час.
|
Изменения в структуре яиц.
|
4 - 8
|
Ускоренное дробление до 2 - 4 бластомеров.
|
16 - 18
|
Дробление прекращается, оболочка яиц набухает, вокруг оболочки заметны тонкие филаментоподобные нити, в бластомерах заметна грануляция протоплазмы, оболочки яиц перестают определяться в поляризованном свете. Яйца окрашиваются раствором Люголя.
|
24 - 30
|
Оболочка яиц сильно набухает и частично мацерируется, структура бластомеров не определяется, все содержимое яиц равномерно гранулированно.
|
Таким образом, предварительные исследования показывают, что препарат Virkon - S может быть эффективен как средство дезинвазии террариумов рептилий, в концентрации 2%. При этом экспозиция в случае стронгиллоидоза должна быть увеличена до 6 - 8 часов и в случае других гельминтозов, включая аскариозы до 18 - 20 часов.
3.4.1.3.2. Предварительная оценка дезинвазионной активности
препаратов Septabic и Bromosept-50.
Состав. Оба препарата относятся к классу четвертичных аммониевых соединений, производятся компанией ABIC, Израиль. Препарат Бромосепт-50 представляет собой 50% дидецил-диметил аммония бромид. Препарат Септабик - 100% дидецил-диметил аммония бромид карбамид кларат. Препараты содержат также ПАВ нового поколения и обладают моющим действием.
Действие. Дезинфектанты общецелевого назначения, обладающие бактерицидным, вирулицидным, фунгицидным и алгицидным действием для применения в медицинских учреждениях, ветеринарии, сельском хозяйстве, промышленности и в быту. Одним из основных свойств этих препаратов является чрезвычайно низкая концентрация, в которой они проявляют свое биоцидное действие. Для целей общей дезинфекции во всех сферах предлагается рабочая концентрация 0,05 - 0,2%. Экспозиция 1 час. Рабочий раствор сохраняет стабильность в течение 7 суток, причем в присутствии органических субстратов, в воде любой жесткости, в широком диапазоне pH и температур. В рекомендуемых концентрациях не вызывает раздражения слизистых и кожи, коррозии металлов, не оказывает отрицательного воздействия на резину, дерево, пластмассу. Оба препарата совместимы с амфотерными, катионными соединениями, щелочами, органическими и неорганическими кислотами. Цена препарата Септабик около 60 долларов США за 1 кг.
В Московском зоопарке препараты Септабик и Бромосепт-50 успешно применяли для дезинфекции рабочих комнат, террариумов для рептилий и герпетологического оборудования. Рабочие растворы 0,05 - 0,1% применяли в соответствии с инструкцией. При вспышке парамиксовирусной пневмонии у ямкоголовых гадюк в мае - июне 1999года, препаратом обрабатывали не только террариумы, но и самих животных ( 0,025% раствор ) без видимого вреда для организма. В качестве средства дезинвазии препарат ранее никогда не испытывали.
В трех экспериментах определяли действие 0,1% растворов Септабика и Бромосепта-50 на яйца Strongyloides sp., Herpetostrongylus pythonis, Capillaria sp. Результаты помешены в таблицы.
Таблица 33 .
Результаты действия 0,1% растворов Септабика и Бромосепта-50
на яйца Strongyloides sp.
Экспозиция, час
|
Изменения в структуре яиц
|
1,1 - 1,5
|
частичная грануляция в клетках личинок, у некоторых нарушение спиральной укладки. Движение личинок сохраняется в самых крупных яйцах.
|
3 - 3,5
|
Вылупилось и погибло 17,9% личинок, в дальнейшем вылупления не происходит. Подвижность сохраняют 1,99% личинок.
|
6 - 7
|
Все личинки погибли, расспирализованы, форма яиц изменена, наблюдается грануляция содержимого яиц.
|
16
|
У части яиц наблюдается разрыв и выпадение бесструктурной протоплазмы.
|
24
|
Лизис отдельных личинок и протоплазмы в яйцах, сохранивших оболочки.
|
Таблица 34 .
Результаты действия 0,1% растворов Септабика и Бромосепта-50
на яйца Herpetostrongylus pythonis и Capillaria sp.
Экспозиция, час
|
Изменения в структуре яиц
|
3 - 3,5
|
В яйцах Capillaria дробление до 2 бластомеров. В яйцах Herpetostrongylus около 40% яиц заканчивает развитие.
|
12 - 16
|
В большинстве яиц Herpetostrongylus личинки закончили развитие, но вылупления не происходит. Заметно набухание оболочки и грануляция содержимого яиц.
|
24 - 36
|
Полное разложение и мацерация содержимого, разрыв оболочек.
|
Таким образом, предварительные исследования показывают, что препараты Септабик и Бромосепт-50 могут быть эффективны как средство дезинвазии террариумов рептилий, в концентрации 0,1%. При этом экспозиция в случае стронгилоидоза должна быть увеличена до 6 - 7 часов, а в случае устойчивых гельминтозов - до 16 - 18 часов. Эти препараты более эффективны чем Виркон, и при стандартном разведении требуется в 20 раз меньше действующего вещества, что значительно уменьшает цену обработки. При дальнейших исследованиях следует определить действие горячих растворов препарата при кратковременной экспозиции.
3.4.1.3.3. Предварительная оценка дезинвазионной активности
препарата Betadin.
Препарат Betadin (повидон-иодид) относится к классу иодофоров. Действующим веществом является активный иод в концентрации 10 мг/мл раствора. Обладает широким спектром активности, в том числе, действует на бактерии, грибы, вирусы, простейшие. Применяют, в зависимости от концентрации для дезинфекции кожи, слизистых оболочек, хирургической дезинфекции, обработки больных перед операциями, для асептического лечения ран. Аналоги и гомологи бетадина ( Tamodine-E, Ark-Klens, Pevidine ) применяют для дезинфекции медицинских помещений и оборудования, в ветеринарии, а также рекомендуют для дезинфекции террариумов и герпетологического оборудования и лечения животных (ИНТЕРНЕТ, htp://www.vetark.co.uk/Reptile%20products.html). Рекомендуемые концентрации 1%, 10% водные растворы (по препарату), а также концентрированный препарат (для дезинфекции здоровой кожи перед парентеральными манипуляциями). В некоторых зоопарках США 0,05% раствор препарата Tamodine-E применяли для обработки вновь поступивших рептилий. В Московском зоопарке препарат используют при лечении дерматитов у рептилий в виде ванн в 1% растворе при экспозиции 30 - 60 минут. При обработке помещений рекомендуют концентрацию 1% и экспозицию 30 минут.
Бетадин не совместим с окислителями, солями щелочей и веществами с кислой реакцией. Распаду действующего вещества в растворе способствуют свет и температура свыше 40°С. Разведенный раствор не сохраняет свою активность.
В трех экспериментах определяли действие 10% раствора Бетадина на яйца Strongyloides sp. и яйца недифференцированных до рода трематод (отряд Fasciolida). Результаты помешены в таблицы.
Таблица 35.
Результаты действия 10% раствора препарата Betadin
на яйца Strongyloides sp.
Экспозиция, час
|
Изменения в структуре яиц.
|
1 - 1,5
|
Спиральная укладка личинок нарушается, оболочка яиц набухает и принимает округлую форму, подвижность личинок во всех яйцах отсутствует
|
3 - 3,5
|
Гибель всех яиц, нарушение целостности оболочек, грануляция клеток личинок.
|
>4
|
Просветление препарата, разложение активного вещества. Новых изменений в структуре яиц не происходит.
|
Таблица 36.
Результаты действия 10% раствора препарата Betadin
на яйца трематод.
Экспозиция, час
|
Изменения в структуре яиц
|
2
|
Наблюдается появление грануляций в протобласте, часть крышечек яиц открывается.
|
4 - 5
|
У 18,5% яиц наблюдается разрыв оболочек и выделение содержимого. У остальных яиц содержимое гранулировано, оболочки набухшие, развития зародыша не происходит.
|
В экспериментах было также определено действие Бетадина на яйца Strongyloides sp. в 1% и 0,5% концентрациях. При этом в 0,5% растворе через 24 часа большая часть личинок, как находящихся в яйце, так и вылупившиеся, сохраняла подвижность. Заметных изменений в структуре яиц не наблюдалось.
В 1% растворе все личинки в яйцах Strongyloides sp. сохраняли подвижность в течение 5 часов. Окончательная гибель всех личинок отмечалась лишь через 12 - 14 часов.
Таким образом, предварительные исследования показывают, что препарат Бетадин эффективно воздействует на яйца гельминтов только в высоких концентрациях ( не менее 10% по препарату ). Так как активно действующее вещество сохраняет активность в рабочем растворе лишь ограниченное время, требуется подбирать концентрации, вызывающие быструю и эффективную гибель возбудителей инвазии. Необходим поиск более дешевых и стабильных отечественных лекарственных форм из группы иодофоров. Необходимы дальнейшие исследования с применением иных методик, позволяющих оценивать жизнеспособность яиц гельминтов после кратковременной экспозиции рабочими растворами (отмыв суспензии яиц и дальнейшая инкубация).
3.4.1.3.4. Контрольные эксперименты
Для контрольных экспериментов непосредственно перед применением готовили 1% раствор Гигасепта ФФ, рекомендуемого для дезинфекции, а также дехлорированную воду аналогичного объема. При каждом эксперименте испытывали действие Гигасепта на яйца гельминтов в течение 24 часов.
В данной концентрации препарат не оказал какого-либо заметного действия на яйца Strongyloides sp., в которых личинки через 24 часа сохраняли подвижность как внутри яиц, так и после вылупления. Препарат несколько ускорял дробление протобластов в яйцах Ophidascaris papuanus и Capillaria sp. и дифференциацию личинок в яйцах Herperostrongylus pythonis, однако не вызывал заметных изменений в структуре протобластов и оболочках яиц в течение 24 часов. В 10% концентрации препарат не вызвал видимых изменений в яйцах оксиурат и ооцистах изоспор.
В дехлорированной воде в течение 24 часов отмечалось нормальное развитие и вылупление личинок Strongyloides sp., развитие и дифференциация около 1% личинок Herperostrongylus pythonis и не отмечалось каких-либо внешних изменений в яйцах Capillaria sp, Ophidascaris papuanus и яйцах трематод, не дифференцированных до рода.
3.4.2. Выводы.
Использование дезинфицирующих средств, в том числе, дорогостоящих, для дезинвазии нестандартных помещений и оборудования вполне применимо в зоопарках, где такие средства постоянно закупают и применяют для вынужденной, текущей и заключительной дезинфекции. Скрининг и определение активности таких препаратов в качестве средств дезинвазии террариумов является чрезвычайно перспективными.
Предварительные исследования показывают, что дезинфектанты, относящиеся к группам четвертичных аммониевых соединений, перекисьсодержащих и иодофоров, особенно в комплексе с ПАВ, являются активными в отношении слабоустойчивых и устойчивых возбудителей гельминтозов в концентрациях рабочих растворов, рекомендуемых для дезинфекции, но при значительном увеличении времени экспозиции.
Из всех препаратов, активность которых определялась в экспериментах, наиболее эффективным оказался дезинфектант Septabic. Предварительные данные показывают, что при воздействии 0,1% раствора септабика в течение 6 - 7 часов происходит гибель всех яиц Strongyloides, а при продлении экспозиции до 16 - 18 часов гибнут яйца гельминтов, относящихся к устойчивым возбудителям инвазии ( Capillaria sp. ).
При обработке террариумов и оборудования препаратами из рассмотренных групп рекомендуется увеличение времени экспозиции до 24 часов ( при возможности временного перемещения животных ) в случае текущей и заключительной дезинфекции. В случае вынужденных дезинфекций, параллельную дезинвазию террариумов следует проводить по показаниям.
Л И Т Е Р А Т У Р А
AAZV, 1992. Complied reptilian formulary. Ann. Conf. Proc. AAZV.
Anderson N.L., Wack R.F., Calloway L., Hetherington T.E., Williams J.B., 1999. Cardiopulmonary effects and efficacy of propofol as an anesthetic agent in Brown Tre shakesm Boiga irregularis. Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet., 9(2): 9-15.
Barus V., Kornalik F., 1963. On some interesting parasites of snakes (Ophidia) Bitis gabonica A. Dum., Vipera russeli Shaw and Pyton molurus bivittatus Schl. Ceskoslovenska Parasitologie 10: 61-71.
Bennett R,A., 1989. Reptilian surgery. Part 1. Basic principles. Compend. Cont. Ed. Pract. Vet. 11:10.
Bilquees F.M., Siddiqui M.N., 1975. Three helminth parasites of the Wall lizard, Gecko sp., Pakistan J. Sci. Ind. Res., 18: 261-264.
Bosch H., 1991. The pentastome Elenia Heymons, 1932, a parasite genus specific to monitors from the Australian region-biology and aspects of host specificity. Mertensiella, Supplement zu Salamandra, Bonn, 2: 50-56.
Bouman D.D., 1984 - книга учета,
Boyer D.M., 1995. Snake mite (Ophionyssus natricis) eradication utilizing permectrim spray. Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet., 5(1): 4-5.
Brannian R.E., Greve J.H.,1987. Diseases and parasites of captive populatin of Tokay geckos. Proc. First Int. Conf. Zool and Avian Med. pp. 481-486.
Bretland P.M., 1962. Armillifer armillatus infestation. Radiological deagnisis in two Chanaian soldiers. British Journal of Radiology. New series, 35: 603-608.
Brooks D.K., 1984. Platyhelminths. In. “Deseases of amphibians and reptiles”. Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. (Eds.). N.Y., London, Plenum Press, pp. 247-259.
Brumpt E., 1936. Precis de parasetologic. T.2, 6-th Marson et Cie, Editeurs, Paris, pp. 1106.
Bugnion E., 1910. Le pentastome du python (Porocephalus monilifermis Dies). Bull. de la Societe Vaudoise des Sciences Naturelles Ser. 5, 46: 467-472.
Bursey C.R. et al 1995 - на листах,
Campball T.W., 1996. Clinical pathology. In Reptile medicine and surgery. Mader D.R., W.B. Saunders Co., pp. 248-257.
Cannon D.A., 1942. Linguatulid Infestation of man. Annals of Tropical Medicine and Parasitology, 36: 160-167.
Carter O.S., Etges F.G, 1973. Extraintestinal adult cestodes from Anolis carolinensis. J. Parasitol., 59: 1140-1141.
Chartres J.C., 1965. Radiological manufestations of parasitism by the tongue worms, flat worms and the round worms more commonly seen in the tropics. Brit. Journ. Radiology, 38: 503-511.
Cherry R.H., Ayer A.L., 1982. Parasites of American alligators, A. mississippiensis, in South Florida. J. Parasitology, 68: 509.
Conn D.B., Etges F.G., 1984. Helminth parasites of Anolis carolinensis (Reptilia: Lacertilia) from Southeastern Louisiana. Proc. Helminthological Soc. of Washington, 51: 367-369.
Cooper J.E., Jackson O.F. 1981. Diseasea of the Reptilia. Vol. 1-2. London and New York, Academic Press.
Cosgrove G.E., Deakins D.E., Self J.T., 1984. Pentastomiases. In “Diseases of amphibians and reptiles. Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. (Eds.). N.V., London, Plenum Press, pp. 205-212.
Coster P., Rodhain J., 1951. Localisation oculaire de nymphes de porocephalesm che un enfant indigene. Annales de la Societe Belge de Medecine Tropicale, 31: 331-336.
Daniels C.B., 1985. The effect of infection by a parasitic worm on
Deakins D.E., 1971. Pentastomes from Blackbeard Island, Georgia with notes on North American pentastomes. J. Parasitilogy. 57: 1197.
Deakins D.E., 1973. Pentastome pathology in captive reptiles. Ph.D. thesis, Univ. Oklahoma, Norman.
Dopf A., 1937, Un cas de pneuminic a Porocephalus armillatus che un indigene du Dahomey. Annales de la Faculte Francaise de Medecine et de Pharmacie. Beyrouth, 6:112-115.
Doucet J., 1965. Contribytion a letude anatomique, histologique et histochimique et hidyovhimiwuyr frd prnysdyomrd (Pentastomida), Memories Office de la Recherche scientifigue et Techique Outre-Mer, Paris, 14: 1-150.
Draper C., et al., 1981.
Duguy R., 1970. Numbers of blood cells and their variation. In: Biology of the Reptilia, Vol. 3-C, Morphology. Gans C., Parsons T.C. (Eds)., N.Y., Academic Press, pp. 93-109.
Dujardin F., 1843. Memoire sur les helminthes des musaraignes et en particulier sur les Trichosomes, les Distomes et les Taenias, sur leurs matamorphoses et leurs transmigrations. Ann. Sie, Natur., Ser. 2, Zool.
Esslinger J.H., 1962. Development of Porocephalus crotali (Humboldt, 1808) (Pentastomida) in experimental inremnediate hosts. J. Parasitology. 48: 631-638.
Evans E., Cowles R., 1959.
Faust E.C., 1927. Linguatulids (order Acarina) from man and other gosts in China. Am. Journ. Trop Med., 7: 311-325.
Fower M.E., 1978. Zoo and wild animal medicine. Philadelphia, P.A., W.B. Saunders Co.
Frank W., 1964. Die Pathogenen Wirkungen von Macdonaldius oscheri Chabaud et Frank 1961 (Filaroidea, Onchocercidae) bei Verscheridenen Arten von Schlangen (Reptilia, Ophidia). Parasitenk., 24: 249-275.
Freitas T.J.F. e Lent H., 1935. Capillariinae de animales de sangue frio (Nematoda: Trichuroidea). Mem. Inst. O. Cruz. t.30, pp. 241-284.
Frye F.L. (1981). Biomedical and surgical aspects of captive reptile husbandry. First Ed. Edwardsville, KS, Veterinary Medicine Publishing Co.., Inc.
Goldberg S.R., 1985. Larval cestodes (Mesocestoides) in the liver of the island Night lizard, Xanthusia riversiana, J. Wildlife Dis. 21: 310-312.
Goldberg S.R., 1987. Larval cestodes (Mesocestoides sp.) Giant Spotted Whiptail, Cnemidophorus burti stictogrammus. J. Herp., 21(4): 337.
Goldberg S.R., Bursey C.R. 1991. Gastrointestinal helminths of the Mexican horned lizard, Phrynosoma braconnieri and Phrynosoma taurus (Jquanidae) Southwest,. Natur., 36(3): 365-368.
Goldberg S.R., Bursey C.R., 1992. Helminths of the bunch grass lizar, Sceloporus scalaris slevini (Iquanidae). J. Helminthcl. Soc. Washington, 59(1): 130-131.
Haffner K. Von, 1926. Die Sinnesorgane der Linguatuliden, nebst einer Betrachtung uber die systematische Stellung dieser Tierggeuppe. Zeitschrift fur Wissenschaftliche Zoologie, 128: 201-252.
Hamir A.N., 1980. Aortitic caused by Ophidascaris papuanus in a pyton. J.A.N.M.A., 189(9): 1129-1130.
Hartdegen R.W., Greve J.H., 1988. Identification of a gastrointestinal nematode in the Boelen’s python, Morelia boeleni. Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet. 8(1):8.
Herbert C., Dessauer H.C., 1970. Blood chemistry of reptiles. In Biology of the Reptilia. Gans C., Parsons T.C. (Eds.), Vol. 3, San Diego, Academic Press, pp. 1-72.
Herman C.M., 1939. Parasites obtained from animals in the collection of the New York Zoological Park during 1938. Zoologica. N.Y., 24: 481-485.
Herzig M., Hare C.B., 1907. Porocephalus constrictus in a native Filippins. Transactions of the American Microscopial Society. 27: 41-45.
Hett M.L., 1915. On some new pentastomids from the Zoological Society’s gardens, Lionden. Proc. Zool. Soc. London. pp. 115-121.
Heymons R., 1932. Vever eine Abnozmitat bei einer Pentastomide (Armillifer moniliformis Diesing). Sitzungberichte der Gesellschaft Naturforschender Freunde zu Berlin, 3: 287-290.
Heymons R., 1935. Pentastomida. In “Dr. H.G. Bronns, Klassen und Ordnungen des Tierreichs”. Vos. 5, Sec. 4, Book 1. Acagemische Vertag., Leipzig, p.268.
Heymons R., Vitzthum H.G., 1936. Beitrage zur Systematik der Pentastomiden. Zeitschrift fur Parasitenkundem 8: 1-103.
Hill H.R., 1934. The occurence of lenguatulids in Pythons. Bull. Souther California Acad. Sce., 33: 117-122.
Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R., 1984. Diseases of amphibians and reptiles. N.Y., Plenum Press.
Holt P.E., et al., 1979. Strongyloides infection in snakes: three case reports. Vet. Rec., 104: 213-214.
Ippen, Schroder.
Jackson O.F., 1972. helminth infestation in snakes. Vet. Rec., 90:51.
Jacobson E.R., 1986. Pustular dermatitis caused by subcutaneous dracunculiasis in snakes. I.A.V.M.A., 189(9): 1133-1134.
Kanecne I.B., 1986.- сборник Вып. 5.
Kiel I.L., 1975. A review of parasites in snakes. Southwest. Vet., 28(3): 209-220.
Kozlowski S., Mirski B., Zolowski Z., 1958. An instance of generalized porocephalosis in monkay caused by nimphs in the species Armillifer moniliformis (Diesing, 1836). Wiadomosci Parazytologiczne, 4: 755-757.
Kuzmin Y., 1996 - книга учета
Lawrence K., Palmer G.H., Needham J.R., 1986. Use of carbenicillin in two species of tortoese (Testudo graeca and T. hermanni). Res. Vet. Sci., 40: 413-415.
Lesse A.S., 1911. Linguatula larva and peritonitis. J. of Tropical Vet. Science, 6: 268-270.
Leucart R., 1848. Veber die Morphologie und die Verwantschaftsverhaultnisse der wirbellosen Tiere. Braunschweig.
Linder R.R., 1965. Retrospective X-ray survey for porocephalosis, Journ. Trop. Med. Hygiene, 68: 155-156.
Linstow O., 1883. nematoden, Trematoden und Acanthocephalus gesammelt von. Prof. Fedtschenko in Turkestan. Arch. Naturgeschichte. 49: 274-313.
Luecart R., 1854. Bericht uber die Leistungen in der Naturgeschichte der niederen Tiere warhend der Jahre 1848-1853. Arch. Naturgesch. Jg. 20.
Mader D.K., Rosenthal K., 1998. Laboratory sampling in reptile patients - do’s and don’ts. Proc. 5-th An. Conf. Assoc. Rep. Amph. Vet., Kansas City, pp. 55-60.
Marcus L.C., 1981. Veterinary biology and medicine of captive reptiles. >RA and Febiger, PA.
Mc. Arthur S., 1996. Veterinary management of tortoises and turtles. Blachwell Science.
Mendeloff J., 1965. Healed granulomas of the liver due to tongue worm infection. Am. Journ. Clin. Path., 43: 433-437.
Mouchet R., 1914. Note sur Porocephalus monififormis. Bull. de la Soc. de Path. Esotique, 7: 497-501.
Murphy J.B., Collins J.T., 1980. Reproductive biology and disease of captive reptile. Lawrence. KS, Soc. study of Amphibians and Reptiles.
Nicoli R.M., 1963. Phylogenese et systematique le phylun des Pentastomida. Annales de Parasitologic Humaine et Comparee, 38: 483-516.
Nicoli R.M., Nicoli J., 1966. Biologic des pentastomides, Annales de Parasitologie Humaine et Comparee, 41: 255-277.
Noonstein H.H., 1941. Parocephalus in pythons. Natuurweten- schappelijk Tijdschrift voor Nederlandsch - Indie, 101: 148-149.
Osche G., 1963. Die systematische Stellung und Phylogenic der Pentastomida. Embryologische und verleichend- anatomische Studien on Reighardia sternae. Zeitschrift fur Morphologic und Okologie der Tiere. 52: 487-586.
Paramananthan D.C., 1962. Nymphs of Armillifer moniliformis moniliformis Sambon, 1922 in civet cats and wild boar in Ceylon. Ceylon Journ. Med. Sci., 11: 23-27.
Penn G.H. J., 1942. The life histiry of Porocephalus crotali, a parasite of the Louisiana muscrat. H. Wildl, Management, 5: 13-14.
Pienaar V. de V., 1962. Hematology of some South African reptiles. Witwattersrand University Press, pp. 1-229.
Raiti P., 1998. Use of nystatin to reduse suspected overgrowth of enteric fungal organisms in a Diamind python, Morelia spilota spilota and two Homduran milksnakes, Lampropeltis triangulum hondurensis. Bull. Assoc. Rep. Amph. Vet. 8(1): 4-8.
Raphael B., Clark C.H., Hudson R., 1985. Plasma concentration of gentamicin in turtles J. Zoo Anim. Med., 16: 136-139.
Reichenbach-Klinde H.H., Elkan E., 1965. The principal diseases of lower vertebrates. Academic Press, N.Y.
Reichenbach-Klinke H.H. 1977. Krankheiten der Reptilien, 2-nd Ed. Stuttgart, Fisher Verlag.
Ross R.A., 1984. The Bacterial diseases of captive reptiles. Inst. of Herpetological research., California.
Rosskopf w.J., 1992. Use of enroflaxacin. Bul. Assoc. Rep. Amph. Vet. 2(1): 5-6.
Rudolphi C.A., 1819 Entozoorum synopsis, cui accedunt mantissa duplex et indices licupletissimi. Berolini.
Salm A., 1907. Porocephalus moniliforme (Diesing, 1836) et Pentastomum constrictum (Bilh.- V.Sieb., 1851). Gazette Hebdoma-daire. Ses Sciences Medicales de Bordeaux, 28:464.
Sambon L.W., 1922. A synopsis of the family Linguatulidae. Journ. Trop. Med. Hygiene, 25: 188-206.
Schacher J.F., Khalil C.M., Salman S., 1965. A field study of halzoun (Parasitic pharyngitis) in Lebanin. Journal of Tropical Medecine and Hygiene, 68: 226-230.
Self V.T., 1969. Biological relationships of the Pentastomida: A bibliography of the Pentastomida. Exp. Parasitol. 24: 63-119.
Sprent J.F.A., 1973. Studies an ascaridoid nematodes of pytnons: two new species form New Guinea. Parasitology, 67: 229-244.
Sprent J.F.A., 1977. Studies an ascaridoid nematodes of pytnons. A resume. In Лxcerta Parasitologica en memoria del doctor Eduardo Caballero y Caballero”. Instituto de Biologia, Mexico, Publ. Especiales, 4: 477-485.
Sprent J.F.A., 1984. Ascaridoid nematodes. In “Diseases of amphibians and reptiles.” Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. (Eds.). N.Y., Plenum Press, pp. 219-245.
Sprent J.F.A., Mc Keown E.A., 1979. Studies on ascaridoid nematodes in pythons: Development in the definitive host. In “Dynamic aspects of host-parasite relationships”, A.Zuckerman (Ed.), Vol. 3, Israel Univ. Press, Jerusalem.
Stabler R.M., Self J.T., 1967. The binturong: A new host for the nymphs of Armillifer moniliformis (Diesing, 1836). Journ. Parasitology, 53: 923.
Stein G., 1996. Hematologic and blood chemistry values in reptiles. In Reptile medicine and surgery. Mader D.R., W.B., Saunders Co., pp. 473-483.
Swiestra D., Jansen J., Broek E. van den., 1959. Parasites of zoo-animals in the Netherlands. Survey of parasites of zoo-animals and animals not endemic om the Netherlands, identified from 1948 to 1958 inclusive. Tijdschrift woor Diergenceskunde 84., 1301-1305.
Veazey R.S., et al. - на листах.
Velikanov V.P., 1984 - книга учета
Wallach J.D., Boever W.Y., 1983. Disease of exotic aminals. Philadelphia, PA, W.B. Saunders Co., pp 949-1047.
Wyman J., 1865: Observations on Pentastoma armillata, from lungs of Python sebae. Proc. Boston Soc. Natur. Hist. 9: 179-180, 186.
Yamaguti S., 1958-1963. Systema helminthum Vol. I-V. Interscience Publ. Inc., N.Y., London.
Yamaguti S., 1959. Systema helminthum Vol. II. The cestodes of vertebrates. Interscience Publ. Inc., N.Y., London. pp. 171-176.
Yamaguti S., 1961. Systema helminthum Vol. III. The nematodes of vertebrates. Part I. Interscience Publ. Inc., N.Y., London. pp. 123-125.
|
